磷酸化蛋白11點(diǎn)經(jīng)驗(yàn)之談

實(shí)驗(yàn)中磷酸化蛋白有哪些經(jīng)驗(yàn)之談，以下為小編總結(jié)

1.  一定要在lysis buffer中加入蛋白酶抑制劑，還要加入一定量的磷酸酶抑制劑，否則即使band壓出來也會很淺，結(jié)果也不可信。

2.  加一抗后4℃過一夜，保證抗體有充分的結(jié)合時(shí)間。因?yàn)榱姿峄牡鞍字徽伎偟牡鞍琢康臉O少部分。4℃也可使一抗重復(fù)使用多次。畢竟磷酸化的抗體都挺貴的。二抗則室溫1小時(shí)即可。

3.  磷酸化抗體的好壞是一個(gè)關(guān)鍵因素，所以要選擇好的廠商。

4.  根據(jù)廠商的protocol來操作實(shí)驗(yàn)，這是實(shí)驗(yàn)成功的保證。

5.  抗體的稀釋倍數(shù)也要適當(dāng)，不同廠商也會有不同要求。

6.  研究完某一蛋白的磷酸化情況后也要研究一下該蛋白總的表達(dá)量。如壓完phospho-p38抗體后，把相同的membrane做strip后再壓p38，然后再strip一次，再壓內(nèi)標(biāo)actin。

7.  做磷酸化蛋白WB時(shí)，除了目標(biāo)蛋白的band以外，往往會出現(xiàn)非特異性的band。磷酸化抗體不好的話，甚至?xí)撼龇翘禺愋缘腷and，而沒有你想要的band，所以壓片以后，你一定要根據(jù)markers比對一下，你壓出的band分子量是否正確。

8.  磷酸化蛋白WB時(shí)backgroud也往往較深，所以壓片時(shí)間要適當(dāng)，不能太長或過短，太長則backgroud太深蓋住想要的那條band，時(shí)間過短則可能沒有band或者band太淺。

9.  磷酸化蛋白WB時(shí)，用TBST洗時(shí)也要注意一下，搖床的轉(zhuǎn)速不要太快，洗的時(shí)間不要太長，孵育一抗和二抗之后分別洗5 min 3次即可，寧愿background深一些，總比做不出來強(qiáng)得多。另外，洗的時(shí)候，不要把幾張membrane疊在一起洗。

10.  研究完某一蛋白的磷酸化情況后也要研究一下該蛋白總的表達(dá)量。這有兩種方法，一是：相同的sample在不同的well中上樣兩次（可在相同的 gel上，也可在不同的gel），其一壓磷酸化蛋白，另一壓該蛋白總的表達(dá)量（包括磷酸化和未磷酸化的該蛋白），甚至還可跑另一個(gè)gel，壓內(nèi)標(biāo)。但是不 建議如此做，因?yàn)檫@樣比較時(shí)誤差還是較大的。

11.  Strip時(shí)一定要注意：membrane一定要*泡在strip solution中（可用較硬的塑料膜封好），然后要*浸入水中，使受熱均勻。這一點(diǎn)很重要，要不然，隨后壓出來的總蛋白也好，內(nèi)標(biāo)也好就會不均一，無法進(jìn)行比較。

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